Vitiligo
análise da área enxertada comparada com curetagem isolada através de morfologia celular e transcriptase reversa da reação de polimerase em cadeia do RNA mensageiro da tirosinase
Palavras-chave:
Vitiligo, Transplantes, Tirosinase, Reação em cadeia de polimerase, PatologiaResumo
CONTEXTO E OBJETIVO: Estudos recentes têm indicado que áreas de vitiligo contêm melanócitos inativos ou dormentes. A síntese de melanina está relacionada com a presença de tirosinase é indicadora de estado metabólico ativo. O escopo deste artigo é comparar repigmentação, distribuição epidérmica de melanócitos e detecção do RNAm de tirosinase através da reação de polimerase em cadeia por transcriptase reversa, em amostras de tecido de vitiligo, antes e após curetagem, seguido ou não por uma nova técnica de enxerto autólogo de pele. TIPO DE ESTUDO E LOCAL: Prospectivo, na Disciplina de Dermatologia da Faculdade de Medicina do ABC, Santo André. MÉTODOS: Duas áreas de vitiligo foram curetadas. Uma foi subseqüentemente enxertada com pele autóloga sacral normal, enquanto a outra não recebeu nenhum enxerto. As áreas curetadas foram examinadas após 30 dias, para avaliar o grau de repigmentação. A porcentagem de melanócitos e a presença de RNAm de tirosinase de pele normal e de pele de vitiligo (antes e após curetagem apenas e antes e após curetagem seguida de enxertia) foram comparadas. RESULTADOS: Repigmentação completa foi observada em todas as áreas enxertadas, enquanto as áreas de vitiligo apenas curetadas apresentaram repigmentação parcial. A porcentagem de melanócitos nas áreas enxertadas excederam as áreas de vitiligo não tratados (p = 0.01) e as áreas tratadas com curetagem simples (p = 0,015). RNAm de tirosinase foi negativo em 93.75% das áreas não tratadas de vitiligo. Após tratamento (somente curetagem ou curetagem seguida de enxerto), todas as lesões tornaram-se positivas para RNAm de tirosinase. CONCLUSÃO: Melanócitos metabolicamente inativos ou dormentes estão provavelmente presentes dentro das áreas de vitiligo, e podem ser ativados por estímulos endógenos ou exógenos.
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Referências
Pawelek JM. After dopachrome? Pigment Cell Res. 1991;4(2):53-62.
Breathnach AS, Bor S, Wyllie LM. Electron microscopy of peripheral nerve terminals and marginal melanocytes in vitiligo. J Invest Dermatol. 1966;47(2):125-40.
Xie Z, Chen D, Jiao D, Bystryn JC. Vitiligo antibodies are not directed to tyrosinase. Arch. Dermatol. 1999;135(4):417-22.
Okamoto T, Irie RF, Fujii S, et al. Anti-tyrosinase-related protein-2 immune response in vitiligo patients and melanoma patients receiving active-specific immunotherapy. J Invest Dermatol. 1998;111(6):1034-9
Bartosik J, Wulf HC, Kobayasi T. Melanin and melanosome complexes in long standing stable vitiligo - an ultrastructural study. Eur J Dermat. 1998;8(2):95-7.
Galadari E, Mehregan AH, Hashimoto K. Ultrastructural study of vitiligo. Int J Dermatol. 1993;32(4):269-71.
Le Poole IC, van den Wijngaard RM, Westerhof W, Dutrieux RP, Das PK. Presence or absence of melanocytes in vitiligo lesions: an immunohistochemical investigation. J Invest Dermatol. 1993;100(6):816-22.
Hirobe T. Structure and function of melanocytes: microscopic morphology and cell biology of mouse melanocytes in the epider- mis and hair follicle. Histol Histopathol. 1995;10(1):223-37.
Blaheta HJ, Schittek B, Breuninger H, et al. Detection of melanoma micrometastasis in sentinel nodes by reverse transcrip- tion-polymerase chain reaction correlates with tumor thickness and is predictive of micrometastatic disease in the lymph node basin. Am J Surg Pathol. 1999;23(7):822-8.
Ortonne JP, MacDonald DM, Micoud A, Thivolet J. PUVA- induced repigmentation of vitiligo: a histochemical (split-DOPA) and ltrastructural study. British J Dermatol. 1979;101(1):1-12.
Chakrabarti SG, Grimes PE, Minus HR, Kenney JA Jr, Pradhan TK. Determination of trimethylpsoralen in blood, ophthalmic fluids, and skin. J Invest Dermatol. 1982;79(6):374-7.
Urbanek RW. Tar vitiligo therapy. J Am Acad Dermatol.1983;8(5):755.
Camacho F, Mazuecos J. Treatment of vitiligo with oral and topical phenylalanine: 6 years of experience. Arch Dermatol. 1999;135(2):216-7.
Parsad D, Saini R, Verma N. Combination of PUVAsol and topi- cal calcipotriol in vitiligo. Dermatology. 1998;197(2):167-70.
Schallreuter KU, Moore J, Wood JM, et al. In vivo and in vitro evidence for hydrogen peroxide (H2O2) accumulation in the epidermis of patients with vitiligo and its successful removal by UVB-activated pseudocatalase. J Investig Dermatol Symp Proc. 1999;4(1):91-6.
Koga M. Vitiligo: a new classification and therapy. Br J Derma- tol. 1977;97(3):255-61.
Vasistha LK, Singh G. Vitiligo and intralesional steroids. Indian J Med Res. 1979;69:308-11.
Gokhale BB, Mehta LN. Histopathology of vitiliginous skin. Int J Dermatol. 1983;22(8):477-80.
Tsuji T, Hamada T. Topically administered fluorouracil in vitiligo. Arch Dermatol. 1983;119(9):722-7.
Mosher DB, Parrish JA, Fitzpatrick TB. Monobenzylether of hydroquinone. A retrospective study of treatment of 18 vitiligo patients and a review of the literature. Br J Dermatol. 1977;97(6):669-79.
Orentreich N. Autografts in alopecias and other selected der- matological conditions. Ann N Y Acad Sci. 1959;83:463-79.
Bonafe JL, Lassere J, Chavoin JP, Baro JP, Jeune R. Pigmentation induced in vitiligo by normal skin grafts and PUVA stimulation: a preliminary study. Dermatologica. 1983;166(3):113-6.
Malakar S, Dhar S. Repigmentation of vitiligo patches by trans- plantation of hair follicles. Int J Dermatol. 1999;38(3):237-38.
Andreassi L, Pianigiani E, Andreassi A, Taddeucci P, Biagioli M. A new model of epidermal culture for the surgical treatment of vitiligo. Int J Dermatol. 1998;37(8):595-8.
Njoo MD, Das PK, Bos JD, Westerhof W. Association of the Kobner phenomenon with disease activity and therapeutic responsiveness in vitiligo vulgaris. Arch Dermatol.1999;135(4):407-13.
Brossart P, Keilholz U, Willhauck M, Scheibenbogen C, Mohler T, Hunstein W. Hematogenous spread of malignant melanoma cells in different stages of disease. J Invest Dermatol. 1993;101(6):887-9.
Naeyaert JM, Eller M, Gordon PR, Park HY, Gilchrest BA. Pigment content of cultured human melanocytes does not correlate with tyrosinase message level. Br J Dermatol. 1991;125(4):297-303.
Abdel-Malek Z, Swope VB, Suzuki I, et al. Mitogenic and melanogenic stimulation of normal human melanocytes by melanotropic peptides. Proc Natl Acad Sci U S A. 1995;92(5):1789-93.
Archambault M, Yaar M, Gilchrest BA. Keratinocytes and fibroblasts in a human skin equivalent model enhance melano- cyte survival and melanin synthesis after ultraviolet irradiation. J Invest Dermatol. 1995;104(5):859-67.
Horikawa T, Norris DA, Yohn JJ, Zekman T, Travers JB, Morelli JG. Melanocyte mitogens induce both melanocyte chemokinesis and chemotaxis. J Invest Dermatol. 1995;104(2):256-9.
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