Células CD34-positivas e suas subpopulações caracterizadas por análise de citometria de fluxo em doadores para transplante alogênico de medula óssea
Palavras-chave:
Células-tronco hematopoéticas, Imunofenotipagem, Antígeno CD34, Hematopoese, Transplante de medula ósseaResumo
CONTEXTO E OBJETIVO: A contagem e separação de células-tronco hematopoéticas de diferentes fontes tem importância para ensaios clínicos e pesquisa basica. Nosso objetivo foi caracterizar e quantificar as populacões de células hematopoéticas, bem como avaliar a expressão do antígeno CD34 em populações mais primitivas e correlacioná-las com a enxertia nos doadores de medula óssea para transplante alogênico. TIPO DE ESTUDO E LOCAL: Estudo transversal no qual a diferenciação e a seleção de células-tronco hematopoéticas foram realizadas em amostras de medula óssea de doadores de pacientes submetidos a transplante alogênico nos Hospitais São Paulo e Santa Marcelina, São Paulo, Brasil. MÉTODOS: Imunofenotipagem de células mononucleares de medula óssea foi feita na população de células CD45PerCP+ com os seguintes anticorpos: CD34FITC, CD117PE, CD38PE, CD7FITC, CD33PE, CD10FITC, CD19PE, CD14FITC, CD13PE, CD11cPE, CD15FITC, CD22PE, CD61FITC e CD56PE. Após a definição de regiões de células positivas ao CD34, estas células foram selecionadas e analisadas para a co-expressão do CD38 e CD117. Células mononucleares totais de medula óssea e aquelas obtidas após a seleção foram testadas para a retenção de Rh-123. O teste de Friedman e o coeficiente de Sperman foram utilizados para comparar as expressões e correlacionar a contagem de células CD34+ com a enxertia. RESULTADOS: Na região R1, 0,1% a 2,8% das células foram CD34+/CD45+, porém apenas 1,1% das células foram CD34+/CD45-. As principais coexpressões de células CD45+ foram CD38, CD22, CD19 e CD56 na região R2 e CD33, CD11c, CD14, CD15 e CD61 nas regiões R3 e R4. Após a seleção, a mediana de 2,2x106 células CD34+ foi equivalente a 4,9% do total mediano de células da medula óssea. Co-expressões de células CD34+/CD38+ e CD34+/CD117+ ocorreram em 94,95 e 82%, respectivamente. Houve relação positiva entre o número de células CD34+ infundidas e o dia da enxertia. Observamos que mais de 80% das células mononucleares de medula óssea retêm intensamente a Rh-123. Após a seleção, células localizadas em regiões de maior diferenciação, regiões R3 e R4, acumulam mais fortemente a Rh-123 do que células mais primitivas da região R1. CONCLUSÃO: Postulamos que a célula tronco hematopoética mais primitiva expressa o seguinte fenótipo: CD34+/CD45-/CD38-/Rh-123 de baixa retenção.
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Referências
Dexter TM, Spooncer E. Growth and differentiation in the hemapoietic system. Annu Rev Cell Biol. 1987;3:423-41.
Gratama JW, Sutherland DR, Keeney M. Flow cytometric enumeration and immunophenoty- ping of hematopoietic stem and progenitor cells. Semin Hematol. 2001;38(2):139-47.
Andrews RG, Singer JW, Bernstein ID. Monoclonal antibody 12-8 recognizes a 115-kd mo- lecule present on both unipotent and multipotent hematopoietic colony-forming cells and their precursors. Blood. 1986;67(3):842-5.
Civin CI, Strauss LC, Brovall C, Fackler MJ, Schwartz JF, Shaper JH. Antigenic analysis of hematopoiesis. III. A hematopoietic progenitor cell surface antigen defined by a monoclonal antibody raised against KG-1a cells. J Immunol. 1984;133(1):157-65.
McGuckin CP, Pearce D, Forraz N, Tooze JA, Watt SM, Pettengell R. Multiparametric analysis of immature cell populations in umbilical cord blood and bone marrow. Eur J Haematol. 2003;71(5):341-50.
Hou YH, Srour EF, Ramsey H, Dahl R, Broxmeyer HE, Hromas R. Identification of a hu- man B-cell/myeloid common progenitor by the absence of CXCR4. Blood. 2005;105(9): 3488-92.
Escribano L, Ocqueteau M, Almeida J, Orfao A, San Miguel JF. Expression of the c-kit (CD117) molecule in normal and malignant hematopoiesis. Leuk Lymphoma. 1998;30(5-6):450-66.
Syrjälä M, Ruutu T, Jansson SE. A flow cytometric assay of CD34-positive cell populations in the bone marrow. Br J Haematol. 1994;88(4):679-84.
Edvarsson L, Dykes J, Olofsson T. Isolation and characterization of human myeloid proge- nitor populations--TpoR as discriminator between common myeloid and megakaryocyte/ erythroid progenitors. Exp Hematol. 2006;34(5):599-609.
Orfao A, Ruiz-Arguelles A, Lacombe F, Ault K, Basso G, Danova M. Flow cytometry: its appli- cations in hematology. Haematologica. 1995;80(1):69-81.
Ratajczak MZ, Pletcher CH, Marlicz W, et al. CD34+, kit+, rhodamine123(low) phenotype identifies a marrow cell population highly enriched for human hematopoietic stem cells. Leukemia. 1998;12(6):942-50.
Pontvert-Delucq S, Breton-Gorius J, Schmitt C, Baillou C, Guichard J, Najman A, Lemoine FM. Characterization and functional analysis of adult human bone marrow cell subsets in relation to B-lymphoid development. Blood. 1993;82(2):417-29.
Terstappen LW, Huang S, Picker LJ. Flow cytometric assessment of human T-cell differentia- tion in thymus and bone marrow. Blood. 1992;79(3):666-77.
Bender JG, Unverzagt KL, Walker DE, et al. Identification and comparison of CD34-positive cells and their subpopulations from normal peripheral blood and bone marrow using multi- color flow cytometry. Blood. 1991;77(12):2591-6.
Spangrude GJ, Perry SS, Slayton WB. Early stages of hematopoietic differentiation. Ann N Y Acad Sci. 2003;996:186-94.
Loken MR, Shah VO, Dattilio KL, Civin CI. Flow cytometric analysis of human bone marrow. II. Normal B lymphocyte development. Blood. 1987;70(5):1316-24.
Chabannon C, Wood P, Torok-Storb B. Expression of CD7 on normal human myeloid progeni- tors. J Immunol. 1992;149(6):2110-3.
Miller JS, Alley KA, McGlave P. Differentiation of natural killer (NK) cells from human primitive marrow progenitors in a stroma-based long-term culture system: identification of CD34+7+ NK progenitor. Blood. 1994;83(9):2594-601.
Inaba T, Shimazaki C, Hirata T, et al. Phenotypic differences of CD34-positive stem cells harvested from peripheral blood and bone marrow obtained before and after peripheral blood stem cell collection. Bone Marrow Transplant. 1994;13(5):527-32.
Smeland EB, Funderud S, Kvalheim G, et al. Isolation and characterization of human he- matopoietic progenitor cells: an effective method for positive selection of CD34+ cells. Leukemia. 1992;6(8):845-52.
Rutella S, Bonanno C, Marone M, et al. Identification of a novel subpopulation of human cord blood CD34-CD133-CD7-CD45+lineage- cells capable of lymphoid/NK cell differen- tiation after in vitro exposure to IL-15. J Immunol. 2003;171(6):2977-88.
Perez SA, Sotiropoulou PA, Gkika DG, et al. A novel myeloid-like NK cell progenitor in human umbilical cord blood. Blood. 2003;101(9):3444-50.
Sconocchia G, Fujiwara H, Rezvani K, et al. G-CSF mobilized CD34+ cells cultured in in- terleukin-2 and stem cell factor generate a phenotypically novel monocyte. J Leukoc Biol. 2004;76(6):1214-9.
Mouthon MA, Freund M, Titeux M, et al. Growth and differentiation of the human megaka- ryoblastic cell line (ELF-153): a model for early stages of megakaryocytopoiesis. Blood. 1994;84(4):1085-97.
Sperling C, Schwartz S, Büchner T, Thiel E, Ludwig WD. Expression of the stem cell factor receptor C-KIT (CD117) in acute leukemias. Haematologica. 1997;82(5):617-21.
Ashman LK, Cambareri AC, To LB, Levinsky RJ, Juttner CA. Expression of the YB5.B8 antigen (c-kit proto-oncogene product) in normal human bone marrow. Blood. 1991;78(1):30-7.
Ishikawa F, Livingston AG, Minamiquchi H, Wingard JR, Ogawa M. Human cord blood long- term engrafting cells are CD34+ CD38-. Leukemia. 2003;17(5):960-4.
Tian H, Huang S, Gong F, Tian L, Chen Z. Karyotyping, immunophenotyping, and apoptosis analyses in human hematopoietic precursor cells derived from umbilical cord blood follo- wing long-term ex vivo expansion. Cancer Genet Cytogenet. 2005;157(1):33-6.
Shim MH, Hoover A, Blake N, Drachman JG, Reems JA. Gene expression profile of primary human CD34+CD38lo cells differentiating along the megakaryocyte lineage. Exp Hematol. 2004;32(7):638-48.
Massa M, Rosti V, Ferrario M, et al. Increased circulating hematopoietic and endothelial progenitor cells in the early phase of acute myocardial infarction. Blood. 2005;105(1): 199-206.
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