Enzymes and membrane proteins of ADSOL-preserved red blood cells

Autores

  • Maria Sueli Soares Leonart Universidade Federal do Paraná
  • Aguinaldo José Nascimento Universidade Federal do Paraná
  • Kimiyo Nonoyama Instituto Adolfo Lutz
  • Cinthia Barbosa Pelissari Centro de Hematologia e Hemoterapia do Paraná
  • Orlando Cesar de Oliveira Barretto Universidade de São Paulo

Palavras-chave:

Red cell ageing, Red cell membrane proteins, Red cell enzymes, Red cell preservation, ADSOL

Resumo

CONTEXTO: A solução preservadora ADSOL (adenina, dextrose, sorbitol, cloreto de sódio e manitol) mantém a viabilidade dos glóbulos vermelhos para transfusão durante seis semanas. Seria assim útil determinar sua preservação por tempos maiores. OBJETIVO: Determinar alguns parâmetros bioquímicos eritrocitários até 14 semanas visando saber se a integridade do metabolismo eritrocitário justificaria estudos posteriores com o propósito de alongar sua preservação e viabilidade. TIPO DE ESTUDO: Avaliação bioquímica para avaliar a preservação de hemácias. LOCAL: Centro de referência de metabolismo eritrocitário da Faculdade de Medicina da USP, São Paulo e Universidade Federal do Paraná, Curitiba. AMOSTRA: Seis doadores de sangue do hospital universitário da Universidade Federal do Paraná, Curitiba, Brasil. VARIÁVEIS ESTUDADAS: Foi realizada a determinação semanal de adenosina-5´-trifosfato, 2,3-difosfoglicerato, hexoquinase, fosfofrutoquinase, piruvato quinase, glicose-6-fosfato desidrogenase, 6-fosfogliconico desidrogenase, gliceraldeido-3-fosfato desi-drogenase, glutationa redutase, glutationa peroxidase, bem como a dosagem de sódio e potássio plasmáticos, pH sangüíneo, e a determinação das proteínas da membrana eritrocitária por eletroforese em gel de poliacrilamida. RESULTADOS: Durante a preservação o ATP caiu 60% em cinco semanas, e 90% depois de 10 semanas. O 2,3-DPG permaneceu estável durante a primeira semana, caiu 90% depois de três semanas e se exauriu depois de cinco semanas. O pH decresceu de 6,8 na primeira semana a 6,4 na 14a semana. Depois de cinco semanas houve diminuição de 16 a 31% das atividades da hexoquinase, gliceraldeído-3-fosfato desidrogenase, glutationa redutase, e 45% da piruvato quinase. Em seguida, observou-se um decréscimo de 10% para todas enzimas até a 14a semana. A eletroforese em gel de poliacrilamida das proteínas da membrana eritrocitária não revelou alterações nas concentrações relativas das bandas durante e ao cabo das 14 semanas. CONCLUSÕES: Embora a viabilidade do sangue seja pobre da 6a à 14a semana, devido à depleção de ATP e de 2,3-DPG, os demais parâmetros bioquímicos decaíram gradualmente. Este achado pode sugerir que os glóbulos vermelhos preservados em ADSOL possam ser utilizados como padrões de enzimas eritrocitárias e de proteínas da membrana.

Downloads

Não há dados estatísticos.

Biografia do Autor

Maria Sueli Soares Leonart, Universidade Federal do Paraná

MD. Professor of Clinical Pathology, Divisão de Saúde da Universidade Federal do Paraná, Curitiba, Brazil.

Aguinaldo José Nascimento, Universidade Federal do Paraná

MD. Associate Professor of Biochemistry, Departamento de Bioquímica, Divisão de Saúde, Universidade Federal do Paraná, Curitiba, Brazil.

Kimiyo Nonoyama, Instituto Adolfo Lutz

MD. Research IV, Instituto Adolfo Lutz, São Paulo, Brazil.

Cinthia Barbosa Pelissari, Centro de Hematologia e Hemoterapia do Paraná

Biologist, Centro de Hematologia e Hemoterapia do Paraná, Curitiba, Brazil.

Orlando Cesar de Oliveira Barretto, Universidade de São Paulo

MD. Associate Professor, Faculdade de Medicina da Universidade de São Paulo, LIM-23, São Paulo, Brazil.

Referências

Högman CF, Hedlund K, Zetterstorm H. Clinical use fullness of red cells preserved in protein-poor medium. N Engl J Med 1978;299:1377-82.

Heaton A, Miripol J, Grapka B, Dehart D, Seeger C, Rzad L, Aster R. Improved storage of high hematocrit cell concentrates using a mannitol, adenine, saline, glucose solution. Transfusion 1981;21:600-1.

Högman CF, Akerblom O, Hedlund K, Rosén I, Wiklund, L. Red cell suspensions in SAGM medium. Vox Sang 1983;45:217-23.

Strauss D. CDS-AG medium for red blood cell preservation. Biomed Biochim Acta 1983;42:332-6.

Dawson RB, Fagan DS, Meyer DR. Dihydroxyacetone, pyruvate, and phosphate effects on 2,3-DPG and ATP in citrate-phosphate-dextrose-adenine blood preservation. Transfusion 1984;24:327-9.

Meryman HT, Hornblower MLS, Syring RL. Prolonged storage of red cells at 4°C. Transfusion 1986;26:500-5.

Carmen RA, Sohmer PR, Leng BS, et al. Five-week red cell storage with preservation of 2,3-DPG. Transfusion 1988;28:175-161

Heaton A, Miripol J, Aster R, et al. Use of ADSOL preservation solution for prolonged storage of low viscosity AS-1 RBC. Br J Haematol 1984;57:467-78.

Greenwalt TJ, Sostok, CZ, Dumaswala UJ. Studies in red blood cell preservation. Comparison of vesicle formation, morphology, and membrane lipids during storage in AS-1 and CPDA-1. Vox Sang 1990;58:90-3.

Beutler E. Red cell metabolism: a manual of biochemical methods. Orlando: Grune & Stratton; 1984.

Dodge JT, Mitchell C, Hanahan DJ. The preparation and chemical characteristics of hemoglobin-free ghosts of human erythrocytes. Arch Biochem Biophys 1963;100:119-30.

Lowry OH, Rosenbrough NJ, Farr L, Randall RJ. Protein measurements with the Folin phenol reagent. J Biol Chem 1951; 193:265-75.

Laemmli UK. Cleavage of structural proteins during the assembly of the head of bacteriophage T4. Nature 1970;227:680-85.

Fagiolo E, Mores N, Pelliccetti A, Gozzo ML, Zuppi C, Littarru GP. Biochemical parameters to access viability of blood storage for transfusional use. Folia Haematol 1986;113:783-9.

Noble NA, Tanaka KR, Myrhe BA, Johnson DE. Red cell enzyme activities during blood storage and reactivation of phosphofructokinase. Am J Hematol 1982;13:1-8.

Barretto OCO, Nonoyama K, Sawatani E, Tanaka K, Okumura Y, Jamra MA. Viablidade de sangue conservado em recipientes de várias procedências. Rev Ass Med Bras 1983;29:102-5.

Mourad N. Effect of prolonged storage on erythrocyte enzymes. Transfusion 1969;9:141-2.

Nakao M, Nakayama T, Decrease in phosphofructokinase activity during blood preservation and the effect of intracellular ATP. Biochem Biophys Res Commun 1980;95:1294-8.

Wolfe LC, Byrne AM, Lux SE. Molecular defect in the membrane skeleton of blood bank-stored red cells. J Clin Invest 1986;78:1681-6.

Kadlubowski M. The effect of in vivo aging of the human erythrocytes on the proteins of the plasma membrane: a comparision with metabolic depletion and blood bank storage. J Biochem 1978;9:79-8.

Schrier SL, Sohmer PR, Moore GL, Junga I. Red blood cell membrane abnormalities during storage. Transfusion 1982;22:261-5.

Halbhuber KJ, Feuerstein H, Stibenz D, Linss W. Membrane alteration during banking of red blood cells. Biomed Biochim Acta 1983;42:337-41.

Wegner G, Kucera W, Lerche D. Deformability characterization of erythrocytes stored under different resuspension media. Folia Haematol 1987;114:474-7.

Downloads

Publicado

2000-03-03

Como Citar

1.
Leonart MSS, Nascimento AJ, Nonoyama K, Pelissari CB, Barretto OC de O. Enzymes and membrane proteins of ADSOL-preserved red blood cells. Sao Paulo Med J [Internet]. 3º de março de 2000 [citado 15º de março de 2025];118(2):41-5. Disponível em: https://periodicosapm.emnuvens.com.br/spmj/article/view/2622

Edição

Seção

Artigo Original